Gupta_Manual Duke.1ed

Capí tulo 32 d TRATAMI ENTO DE LA DEF I C I ENC IA DE CÉLULAS MADRE DEL L IMBO 149

Ojo de donante fallecido: preparación del tejido del donante Véase la sección sobre KLAL (misma técnica quirúrgica), con la excepción de que se conserva el tejido conjuntival. Quizá el cirujano prefiera inflar la conjuntiva con líquido para disminuir la posibilidad de que se produzca un ojal en la conjuntiva. Ojo del receptor Lo mismo que para el CLAU o el KLAL. Colocación del tejido del donante en el ojo del receptor Lo mismo que para el CLAU, pero a continuación se presentan algunas notas adicionales espe cíficas para el Lr-CLAL. • Suture el tejido vivo cosechado en los meridianos de las 12 y las 6 horas con nailon 10-0; primero suture la parte queratolimbal hacia abajo: muchos cirujanos no entierran estos nudos, ya que sirven como un futuro marcador de la ubicación del injerto. • A continuación, suture los segmentos de KLAL del donante fallecido hacia abajo, empe zando por la parte queratolimbal de la posición de las 3 y 9 horas. • Algunos cirujanos también suturan la conjuntiva periférica del donante al borde de la con juntiva del ojo del receptor con suturas de Vicryl ® o nailon 10-0. • Se aplica adhesivo tisular para fijar la base de los segmentos de tejido de CLAU a la esclera del receptor. • Algunos cirujanos también cubren y fijan una membrana amniótica sobre la zona previa mente cicatrizada. • Al final de la operación, se inyectan esteroides y antibióticos subconjuntivales en el ojo del receptor. Se coloca una lente de contacto suave de gran diámetro (como Kontour ® ) y se pega un parche y un protector. Consideraciones postoperatorias únicas del Lr-CLAL Similares a las del KLAL. Referencias 1. Chan CC, Biber JM, Holland EJ. The modified Cincinnati procedure: combined conjuncti val limbal autografts and keratolimbal allografts for severe unilateral ocular surface failure. Cornea . 2012;31(11):1264-1272. 2. Deng SX, Borderie V, Chan CC, et al. Global consensus on definition, classification, diagnosis, and staging of limbal stem cell deficiency. Cornea . 2019;38(3):364-375. 3. Cheung AY, Sarnicola E, Kurji KH, et al. Cincinnati protocol for preoperative screening and donor selection for ocular surface stem cell transplantation. Cornea . 2018;37(9):1192-1197. 4. Ang AY, Chan CC, Biber JM, Holland EJ. Ocular surface stem cell transplantation rejection: incidence, characteristics, and outcomes. Cornea . 2013;32(3):229-236. 5. Holland EJ, Mogilishetty G, Skeens HM, et al. Systemic immunosuppression in ocular surface stem cell transplantation: results of a 10-year experience. Cornea . 2012;31(6):655-661. 6. Serna-Ojeda JC, Basu S, Vazirani J, Garfias Y, Sangwan VS. Systemic immunosuppression for limbal allograft and allogenic limbal epithelial cell transplantation. Med Hypothesis Discov Innov Ophthalmol . 2020;9(1):23-32. 7. Shanbhag SS, Patel CN, Goyal R, Donthineni PR, Singh V, Basu S. Simple limbal epithelial transplantation (SLET): review of indications, surgical technique, mechanism, outcomes, lim itations, and impact. Indian J Ophthalmol . 2019;67(8):1265-1277. SAMPLE